Avaliação antioxidante e mutagênica do extrato aquoso de cupuaçu em animais expostos a ciclofosfamida
DOI:
https://doi.org/10.36560/16520231697Palavras-chave:
Theobroma grandiflorum S., Antimutagenicidade, Teste de micronúcleo, Ciclofosfamida, Camundongos SwissResumo
O cupuaçu (Theobroma grandiflorum S.) é um fruto comestível e originário da região Amazônica brasileira, sendo hoje encontrado em várias partes do mundo. A polpa, bem como a semente, apresenta em sua composição compostos que possuem influência sobre fatores biológicos e consequentemente, podem apresentar efeitos preventivos contra algumas doenças. O estudo teve como objetivo avaliar o efeito protetor do cupuaçu como antioxidante nos tecidos (fígado e cérebro) e na medula óssea de camundongos machos Swiss, através da inibição da mutagenicidade induzida pelo agente alquilante ciclofosfamida (CPA). O extrato aquoso in natura do cupuaçu (EAC) foi usado para os testes in vivo de biomarcadores de estresse oxidativo (superóxido dismutase, catalase, glutationa-S-transferase, glutationa reduzida, ácido ascórbico e carbonilação de proteínas) e do micronúcleo para a avaliação do potencial antimutagênico/mutagênico . Os animais (n= 6 /grupo) foram tratados por 15 dias consecutivos com EAC (via gavagem) e no 15º dia receberam intraperitonealmente NaCl (0,9%) ou CPA (25 mg/Kg), sendo sacrificados 24 horas após o tratamento para avaliação dos parâmetros acima citados e da frequência de eritrócitos policromáticos micronucleados (MNPCE). Os resultados mostraram que o pré-tratamento por 15 dias com o EAC somente aumentou a atividade da superóxido dismutase cerebral e na presença da CPA houve redução desta atividade no fígado. Esta dose de CPA não promoveu alterações per se no status redox, porém o extrato não reduziu a frequência de MNPCE induzida pela CPA, quando comparado com o grupo controle positivo. Ainda, o grupo tratado somente com a polpa não mostrou efeito mutagênico. Diante dos resultados foi possível verificar que o cupuaçu não apresentou atividade antimutagênica/mutagênica e ainda que o processo de congelamento das amostras pode ter interferido nas respostas frente aos parâmetros bioquímicos do status redox avaliados.
Referências
ARAÚJO, É. S., GARCIA, R. S., DAMBRÓS, B., PIENIZA, S., SCHNEIDER, A., ABIB, R.T. Impact of vitamin C supplementation on lipid peroxidation and reduced glutathione levels in the liver tissue of mice with cyclophosphamide-induced immunosuppression. Revista de Nutrição [online], v. 29, n. 04, p. 579-587, 2016. https://doi.org/10.1590/1678-98652016000400012
AU, W., SOKOVA, O. I., KOPNIN, B., ARRIGHI, F. E. Cytogenetic toxicity of cyclophosphamide and its metabolites in vitro. Cytogenetics and Cell Genetics, v. 26, p. 108-116, 1980. doi: 10.1159/000131432.
BARBOSA, F. G., SUGUI, M. M., SINHORIN, V. D. G., BICUDO, R. C., MOURA, F. R., SINHORIN, A. P. First phytochemical and biological study of the ethanolic extract from leaves of Capirona decorticans (Rubiaceae). Acta Amazonica, v. 48, p. 338-346, 2018. https://doi.org/10.1590/1809-4392201703483
BRADFORD, M. M. A. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, v. 72, p. 248-254, 1976. DOI: 10.1006/abio.1976.9999
CURIMBABA, T. F. S., ALMEIDA-JUNIOR, L. D., CHAGAS, A. S., QUAGLIO, A. E. V., HERCULANO, A.M., DI STASI, L. C. Prebiotic, antioxidant and anti-inflammatory properties of edible Amazon fruits. Food Bioscience, v. 36, p. 100599, 2020. https://doi.org/10.1016/j.fbio.2020.100599
EVANS, H.J., SCOTT, D. The induction of chromosome aberrations by nitrogen mustard and its dependence on DNA synthesis. Proceedings of the Royal Society B., v. 173, p. 491-512, 1969.
EZHILARASAN, D. Oxidative stress is bane in chronic liver diseases: Clinical and experimental perspective. Arab Journal of Gastroenterology, v.2, p. 56-64, 2018. doi: 10.1016/j.ajg.2018.03.002.
GHOSH, P., BHATTACHARJEE, A., BASU, A., SINGHA, S., BHATTACHARYA, S. Attenuation of cyclophosphamide-induced pulmonary toxicity in Swiss albino mice by naphthalimide-based organoselenium compound 2- (5-selenocyanatopentyl) - benzo[de]isoquinoline 1,3-dione. Pharmaceutical Biology. v. 53, p. 524-532, 2015. doi: 10.3109/13880209.2014.931440
GODOY, B. R. B., CONTE, A. M., GOVONI, B., BOEIRA, J. M. Evaluation of Micronuclei and Other Nuclear Alterations in Oral Mucosa Exfoliated Cells of Individuals Directly and Indirectly Exposed to Pesticides. Brazilian Journal of Development, v.5, p. 23889–23906, 2019. https://doi.org/10.34117/bjdv5n11-086
HABIG, W. H., PABST, M. J., JACOBY, W. B. Glutathione S-transferase, the first enzymatic step in mercapturic acid formation. Journal of Biological Chemistry, v. 249, p. 7130-7139, 1974. doi: 10.1016/S0021-9258(19)42083-8
IGHODARO, O.M., AKINLOYE, O.A. First line defence antioxidants-superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GPX): Their fundamental role in the entire antioxidant defence grid. Alexandria Journal of Medicine, v. 54, p. 287-293, 2017. https://doi.org/10.1016/j.ajme.2017.09.001.
KERN, J.C., KEHRER, J.P. Acrolein-induced cell death: A caspase-influenced decision between apoptosis
and oncosis/necrosis. Chemical Biological Interactions, v. 139(1), p. 79-95, 2002. doi: 10.1016/s0009-2797(01)00295-2.
KUSKOSKI, E.M.; ASUERO, G.A.; TRONCOSO, A.M.; MANCINI-FILHO, J.; FETT, R. Aplicación de diversos métodos químicos para determinar actividad antioxidante em pulpa de frutos. Revista de Ciência e Tecnologia de Alimentos, Campinas, v.25, n.4, p.726-732, 2005.
LIU, F., LI, X. L ., LIN, T., HE, D.W., WEI, G.H., LIU, J.H., LI, L.S. The cyclophosphamide metabolite, acrolein, induces cytoskeleton changes and oxidative stress in sertoli cells. Molecular Biology Reports, v. 39, p. 493-500, 2012. DOI: 10.1007/s11033-011-0763-9
LUANGMONKONG, T.; SURIGUGA, S.; MUTSAERS, H. A.; GROOTHUIS, G. M.; OLINGA, P.; BOERSEMA, M.. Targeting oxidative stress for the treatment of liver fibrosis. Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology, Springer, v.175, p.71-102, 2018. http://doi.org/10.1007/112_2018_10
LUIZ, T. C.; CUNHA, A. P. S.; AGUIAR, D. ; SUGUI, M. M.; BICUDO, R. C.; SINHORIN, A. P.; SINHORIN, V. D. G. Antioxidant potential of Carica papaya Linn (Caricaceae) leaf extract in mice with cyclophosphamide induced oxidative stress. Scientia Medica Porto Alegre, v. 30, p. 1-15, 2020. DOI: 10.15448/1980-6108.2020.1.34702
MacGREGOR, J. T.; HEDDLE, J. A.; HITE, M.; MARGOLIN, B. H.; RAMEL C.; SALAMONE, M. F.; TIA, R. R.; WILD, D. Guidelines for the conduct of micronucleus assay in mammalian bone marrow erythrocytes. Mutation Research, v.189, p.103-12, 1987. DOI: 10.1016/0165-1218(87)90016-4
MALAVOLTA, E. Elementos de nutrição mineral de plantas. Piracicaba: Ceres, 251p, 1980.
MANOHARAN, K., BANERJEE, M.R. β-Carotene reduces sister chromatid exchange induce chemical
carcinogens in mouse mammary cells in organ culture. Cell Biology International Reports, v. 9, p.783-789.1985. doi: 10.1016/0309-1651(85)90096-7.
MISRA, H. P., FRIDOVICH, I. The role of superoxide anion in the auto-oxidation o epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. Journal of Biological Chemistry, v. 247, p. 3170–3175, 1972. DOI: 10.1016/S0021-9258(19)45228-9
NELSON, D.L., COX, M.M. Princípios de bioquímica de Lehninger, 5.ed., 2011. Porto Alegre. 1274p.
NELSON, D. P., KIESOW, L. A. Enthalphy of decomposition of hydrogen peroxide by catalase at 25°C (with molar extinction coefficients of H2O2 solution in the UV). Analytical Biochemistry; v. 49, p. 474–478, 1972. DOI: 10.1016/0003-2697(72)90451-4
PEREIRA, A.L.F., ABREU, V.K.G., RODRIGUES, S. CUPUASSU - Theobroma grandiflorum, Exotic Fruits, Academic Press, p. 159-162, 2018, ISBN 9780128031384. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-803138-4.00021-6.
PEREIRA, C.A.B. Teste estatístico para comparar proporções em problemas de citogenética, In: RABELLO-GAY, M.N., RODRIGUES M.A, La R., Montelleone-Neto (Eds.) Mutagênese, teratogênese e carcinogênese: métodos e critérios de avaliação. São Paulo: FCA, p.113-21, 1991.
PUGLIESE, A.G., TOMAS-BARBERAN, F.A., TRUCHADO, P., GENOVESE, M.I. Flavonoids, Proanthocyanidins, Vitamin C, and Antioxidant Activity of Theobroma grandiflorum (Cupuassu) Pulp and Seeds. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 61(11), p. 2720–2728, 2013. doi: 10.1021/jf304349u.
PUNARO, G.R., LIMA, D.Y., RODRIGUES, A.M., PUGLIERO, S., MOURO, M.G., ROGERO, M.M., HIGA, E.M.S. Cupuaçu extract reduces nitrosative stress and modulates inflammatory mediators in the kidneys of experimental diabetes. Clinical Nutrition, v. 38 (1), p. 364-371, 2019. https://doi.org/10.1016/j.clnu.2017.12.016.
SEDLACK, J.; LINDSAY, R. H. Estimation of total, protein bound, and nonprotein sulphydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Analytical Biochemistry, v. 25, 192-205, 1968. DOI: 10.1016/0003-2697(68)90092-4
SILVA, E.M., SOUZA, J.N.S., ROGEZ, H., REES, J.F., LARONDELLE, Y. Antioxidant activities and polyphenolic contents of fifteen selected plant species from the Amazonian region. Food Chemistry, v.101, n.3, p.1012-1018, 2007. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.02.055
SOUZA, A.G.C., ALVES, R.M., SOUZA, M.G. Cupuaçu, Theobroma grandiflorum. IICA, Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura, 24 p, 2017.
SPADA, P.D.S., SOUZA, G.G.N., BORTOLINI, G.V., HENRIQUES, J.A.P., SALVADOR, M. Antioxidant, mutagenic, and antimutagenic activity of frozen fruits. Journal of Medicinal Food, v.11(1), p.144-151, 2008.doi: 10.1089/jmf.2007.598.
STANKIEWICZ, A., SKRZYDLEWSKA, E., MAKIELA, M. Effects of amifostine on liver oxidative stress caused by cyclophosphamide administration to rats. Drug Metabolism and Drug Interactions, v.19(2), p.67-82, 2002. doi: 10.1515/dmdi.2002.19.2.67.
VILLACHICA, H. Frutales y hortalizas promisorios de la Amazonia. Lima: Tratado de Cooperacción Amazonia, p. 33-42, 1996.
VRIESMANN, L. C., PETKOWICZ, C.L.O. Polysaccharides from the pulp of cupuassu (Theobroma grandiflorum): Structural characterization of a pectic fraction, Carbohydrate Polymers, v. 77 (1), p. 72-79, 2009. ISSN 0144-8617. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2008.12.007.
YAN, L. J., TRABER, M. G., PACKER, L. Spectrophotometric method for determination of carbonyls in oxidatively modified apolipoprotein B of human lowdensity lipoproteins. Analytical Biochemistry, v. 228, p. 349– 351, 1995. doi: 10.1006/abio.1995.1362
YANG, H., PROTIVA, P., CUI, B., MA, C., BAGGETT, S., HEQUET, V., MORI, S., WEINSTEIN, B.E., KENNELLY, E.J. New Bioactive Polyphenols from Theobroma grandiflorum (“Cupuaçu”). Journal of Natural Products, v. 66, p. 1501-1504, 2003. https://doi.org/10.1021/np034002j
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