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Agricultural Science
DOI: 10.36560/13820201185
Submitted: 2020-06-03
Published: 2020-07-31

Leaching of 2,4-d and atrazine herbicides in red-yellow latosol

Universidade Federal de Mato Grosso, Campus de Cuiabá - MT/Programa de Pós-Graduação em Agricultura Tropical
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S. P. Andrade

Engenheiro agronomo, mestre em agronomia e especilaista em gestão ambiental.

Atualmente, doutornando do Programa de Pós-Graduação em Agricultura Tropical.

Universidade Federal de Mato Grosso, Campus de Sinop - MT/Programa de Pós-Graduação em Agronomia.
Universidade Federal de Mato Grosso, Campus de Sinop - MT/Programa de Pós-Graduação em Agronomia.
Universidade Federal de Mato Grosso, Campus de Sinop - MT/Programa de Pós-Graduação em Agronomia.
Universidade Federal de Mato Grosso, Campus de Cuiabá - MT/Programa de Pós-Graduação em Agricultura Tropical
depth doses cucumber soil

Abstract

The intensive use of herbicides has increased the possibility of environmental contamination and the accumulation of pesticide residues in soil and water. This work aimed to evaluate the leaching potential of 2,4-D and atrazine herbicides in red yellow Latosol with a clayey texture. The experimental design was entirely randomized, in factorial 5x3 (five doses of each herbicide for three soil depths). The doses used were 1.25, 2.50, 6.25 and 12.50 L ha-1 for the 2.4-D herbicide and 2.25, 4.50, 11.25 and 22.50 L ha-1 for the atrazine herbicide (plus absolute witnesses). The herbicides were applied in buried pvc tubes to the soil and after accumulated rainfall of 87 mm, cucumber was grown as a bio indicator plant. The plant phytotoxicity, plant height, dry mass accumulation and leaf area where the evaluations were performed at 21 days after the sowing of the cucumber were analyzed. The 2.4-D herbicide didn`t present significant difference between treatments for the plant phytotoxicity variable, however, there was difference between treatments for plant height and dry mass. For leaf area, the difference was observed only for soil depths. Atrazine herbicide also showed no difference between treatments for plant phytotoxicity, but there was a difference between treatments and soil depths for the other variables. Under the conditions evaluated, 2,4-D and atrazine herbicides can leach into clayey soil regardless of the dose used and can reach up to 30 cm depth.

References

  1. BARRIUSO, E., FELLER, C., CALVET, R., CERRI, C. Sorption of atrazine, terbutryn and 2,4-D herbicides in two brazilian oxisols. Geoderma, v. 53, n. 1/2, p. 155-167, 1992.
  2. BAUMGARTNER, D., SOUZA, E.G., COELHO, S.R.M., MAGGI, M.F. Correlação espacial do residual do herbicida 2,4-D com atributos do solo. Revista Ciência Agronômica, v. 48, n. 3, p. 428-437, 2017.
  3. BELO, A.F., COELHO, A.T.C.P., TIRONI, S.P., FERREIRA, E.A., FERREIRA, L.R., SILVA, A.A. Atividade fotossintética de plantas cultivadas em solo contaminado com picloram. Planta Daninha, v. 29, n. 4, p. 885-892, 2011.
  4. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-83582011000400019
  5. CAMARGO, D., BISPO, K.L., SENE, L. Associação de Rhizobium sp. a duas leguminosas na tolerância à atrazine. Revista Ceres, v. 58, n. 4, p. 425-431, 2011.
  6. http://dx.doi.org/10.1590/S0034-737X2011000400004
  7. CARVALHO, L.B. Herbicidas. Lages, SC, 62 p, 2013.
  8. CERDEIRA, A.L., SOUZA, M.D., PESSOA, M.C.P.Y., QUEIROZ, S.C.N., FERRACINI, V.L., LANCHONTE, V.L., QUEIROZ, R.H.C., BOLONHEZI, D., FARIANI NETO, C. Efeito de sistemas de cultivo com cana-de-açúcar sobre a lixiviação dos herbicidas do grupo das triazinas em região de recarga do Aquífero Guarani. Jaguariúna: EMBRAPA Meio Ambiente, 25 p, 2005.
  9. CHIRUKURI, R., ATMAKURU, R. Sorption characteristics and persistence of herbicide bispyribac sodium in different global soils. Chemosphere, v. 138, s/n., p. 932–939, 2015.
  10. CORREIA, F.V., LANGENBACH, T. Dinâmica da distribuição e degradação de atrazina em argissolo vermelho-amarelo sob condições de clima tropical úmido. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 30, n. 1, p. 183-192, 2006.
  11. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-06832006000100018
  12. CORREIA, F.V., MACRAE, A., GUILHERME, L.R.G., LANGENBACH, T. Atrazine sorption and fate in an Ultisol from humid tropical Brazil. Chemosphere, v. 67, p. 847–854, 2007.
  13. D'ANTONINO, L., SILVA, A.A., FERREIRA, L.R., CECON, P.R., FRANÇA, A.C., SILVA, G.R. Lixiviação do picloram em Argissolo-Vermelho Amarelo e Latossolo Vermelho-Amarelo com diferentes valores de pH. Planta Daninha, v. 27, n. 3, p. 589-600, 2009.
  14. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-83582009000300021
  15. DEUBER, R. Mecanismos de ação dos herbicidas. In: DEUBER, R. Ciência das plantas infestantes: fundamentos. 2.ed. Jaboticabal, SC Funep, p. 304-347, 2003.
  16. EMBRAPA. Sistema brasileiro de classificação de solos. Embrapa Solos, 3. ed. Brasília, DF, 342 p, 2013.
  17. EWRC - European Weed Research Council. Report of the 3.rd. and 4.th. meetings of EWRC Comittee of Methods in Weed Research. Weed Research v. 4, n. 1, 88 p, 1964.
  18. FERREIRA, D.F. Sisvar, A computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 6, p. 1039–1042, 2011.
  19. GOMES, S.A., ARANTES, S.A.C.M., ANDRADE, E.A., ARANTES, K.R., VIANA, D.N., PEREIRA JÚNIOR, C.C. Residual effect of mixture of glyphosate and 2,4-D in winter maize in different soil textures. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, v. 21, n. 5, p. 317-321, 2017.
  20. KAH. M., BEULKE, S., BROWN, C.D. Factors influencing degradation of pesticides in soil. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 55, n. 11, p. 4487–4492, 2007.
  21. https://doi.org/10.1021/jf0635356
  22. LAABS, V., AMELUNG, W., PINTO, A., ALTSTAEDT, A., ZECH, W. Leaching and degradation of corn and soybean pesticides in an oxisol of the brazilian cerrados. Chemosphere, v. 41, p. 1441-1449, 2000.
  23. MANCUSO, M.A.C., NEGRISOLI, E., PERIM, L. Efeito residual de herbicidas no solo (Carryover). Revista Brasileira de Herbicidas, v. 10, n. 2, p. 151-164, 2011.
  24. https://doi.org/10.7824/rbh.v10i2.106
  25. MARTINAZZO, R., DICK, D.P., HIRSCH, M.M., LEITE, S.B., PERALBA, M.C.R. Sorção de atrazina e de mesotriona em latossolos e estimativa do potencial de contaminação. Química Nova, v. 34, n. 8, p. 1378-1384, 2011.
  26. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-40422011000800015
  27. MONQUERO, P.A., SILVA, P.V., HIRATA, A.C.S., TABLAS, D.C., ORZARI, I. Lixiviação e persistência dos herbicidas sulfentrazone e imazapic. Planta Daninha, v. 28, n. 1, p. 185-195, 2010.
  28. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-83582010000100022
  29. PELLEGRINI, L.G., NABINGER, C., NEUMANN, M., CARVALHO, P.C.F., CRANCIO, L.A. Produção de forragem e dinâmica de uma pastagem natural submetida a diferentes métodos de controle de espécies indesejáveis e à adubação. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 39, n. 11, p. 2380-2388, 2010.
  30. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982010001100010
  31. PINHEIRO, A., MORAES, J.C.S., SILVA, M.R. Pesticidas no perfil de solos em áreas de plantação de cebolas em Ituporanga, SC. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, v. 15, n. 5, p. 533-538, 2011.
  32. http://dx.doi.org/10.1590/S1415-43662011000500015
  33. PROSEN, H. Fate and determination of triazine herbicides in soil (Cap. 3). In: HASANEEN, M. N. A. E. (Ed.). Herbicides – Properties, Synthesis and Control of Weeds. Rijeka: Intech, p. 43-58, 2012.
  34. SANTOS, D.P., BRAGA, R.R., GUIMARÃES, F.A.R., PASSOS, A.B.R.J., SILVA, D.V., SANTOS, J.B., NERY, M.C. Determinação de espécies bio indicadoras de resíduos de herbicidas auxínicos. Revista Ceres, v. 60, n. 3, p. 354-362, 2013.
  35. http://dx.doi.org/10.1590/S0034-737X2013000300008
  36. SANTOS, M.V., FERREIRA, F.A., FREITAS, F.C.L., CUSTÓDIO, G.S., FONSECA, D.M., FERREIRA, L.R. Ação residual no solo de herbicidas utilizados em pastagens. In: Congresso Brasileiro da Ciência das Plantas Daninhas, São Pedro, SP, 24 p., 2004.
  37. SHIRVANI, M., FARAJOLLAHI, E., BAKHTIARI, S., OGUNSEITAN, O. A. Mobility andefficacy of 2,4-D herbicide from slow-release delivery systems based on organo-zeolite and organo-bentonite complexes,Journal of Environmental Science and Health, Part B: Pesticides, Food Contaminants, and Agricultural Wastes, v. 49, n. 4, p. 255-262, 2014.
  38. SILVA, A.A., SILVA, J.F. Herbicidas: classificação e mecanismo de ação. In: SILVA, A.A., SILVA, J.F. Tópicos em manejo de plantas daninhas. Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, MG, p. 84-148, 2007.
  39. SILVA, F.M.L., CAVALIERI, S.D., JOSÉ, A.R.S., ULLOA, S.M., VELINI, E.D. Atividade residual de 2,4-D sobre a emergência de soja em solos com texturas distintas. Revista Brasileira de Herbicidas, v. 10, n. 1, p. 29-36, 2011.
  40. https://doi.org/10.7824/rbh.v10i1.85
  41. SOARES, A.F.S., LEÃO, M.M.D., NETO, M.R.V., COSTA, E.P., OLIVEIRA, M.C., AMARAL, N.B. Efficiency of conventional drinking water treatment process in the removal of endosulfan, ethylenethiourea, and 1, 2, 4-triazole. Journal of Water Supply, v. 62, n. 6, p. 367-376, 2013.
  42. https://doi.org/10.2166/aqua.2013.042
  43. TIBÚRCIO, R.A.S., FERREIRA, F.A., PAES, F.A.S.V., MELO, C.A.D., MEDEIROS, W.N. Crescimento de mudas de clones de eucalipto submetidos à deriva simulada de diferentes herbicidas. Revista Ãrvore, v. 36, n. 1, p. 65-73, 2012.
  44. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-67622012000100008

How to Cite

Andrade, S. P., Arantes, S. A. C. M., Andrade, E. A., Pereira, C. S., & Franceschi, M. (2020). Leaching of 2,4-d and atrazine herbicides in red-yellow latosol. Scientific Electronic Archives, 13(8), 1–7. https://doi.org/10.36560/13820201185